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蛋白質(zhì)雙向電泳過程與體會

關(guān)鍵詞: 蛋白質(zhì) 雙向電泳 過程 體會來源: 互聯(lián)網(wǎng)

雙向電泳IEF (sigma) IEF(not IPG)/SDS-PAGE最簡單的裝備推薦如下,適合于沒多少money做IPG又想做“熱”的所謂蛋白質(zhì)組的.

IEF用Biorad的圓盤電泳槽(不行用國產(chǎn)的吧,不推薦),SDS-PAGE用六一廠的就可以了(推薦六一的,買進口電泳槽的錢留出來測搞出的差異蛋白質(zhì)的序列吧)

BIO-RAD 的圓盤電泳槽,國產(chǎn)的不推薦,因為上槽Biorad 的鉑金絲凹進去了一點,不是很進去,而國產(chǎn)的凹得太進去了以至于電聚焦時產(chǎn)生的氣泡繞在鉑金絲一圈,影響電聚焦。

雙向電泳

蛋白質(zhì)樣品制備

秧苗蛋白質(zhì)樣品的提取按Davermal 等(1986)的方法進行。100mg 材料剪碎后加入10mgPVP-40(聚乙烯吡咯烷酮)及少量石英砂,用液氮研磨成粉,加入1.5 ml 10% 三氯乙酸(丙酮配制,含10mM 即0.07%β- 巰基乙醇),混勻,-20℃沉淀1 小時,4℃,15000 r/min離心15 min,棄上清,沉淀復溶于1.5ml冷丙酮(含10 mMβ-巰基乙醇),再于-20℃沉淀1小時,同上離心棄上清,(有必要再用80%丙酮(含10 mMβ-巰基乙醇所得沉淀低溫冷凍真空抽干。

按每mg干粉加入20μl(可調(diào))UKS液[9.5 M尿素,5mM 碳酸鉀,1.25%SDS,0.5%DTT(二硫蘇糖醇),2% Ampholine (Amersham Pharmacia Biotech Inc,pH3.5-10),6% Triton X-100],37℃育30min,期間攪動幾次,28度 (溫度低,高濃度的尿素會讓溶液結(jié)冰)16000 r/min離心15 min,離心力越大時間長一點越好!上清即可上樣電泳。或者-70度保存 。

2 蛋白質(zhì)濃度測定

按Garrels(1983)的程序,稍加改動。10μl上述用UKS液制得的蛋白質(zhì)樣品中加入40μl 水及50μl 20%三氯乙酸,冰浴30min后,4℃,4000 r/min離心15min,棄上清,再加入100μl冷丙酮,同上離心5min,棄上清,凍干沉淀,用100μl PBS溶液復溶,并按Bradford(1976)的程序測定蛋白質(zhì)濃度。說實話,好象Bradford法不太好做 。

2.3.1 電聚焦(IEF)

2.3.1.1 玻管準備

干凈玻管(18cm×1.5mm)用Parafilm封口膜封好底部,在16cm處作好標記,垂直放在泡沫板上。電聚焦的管子,買原裝的也可以,實在不行自己也可以做的,1ml 的移液管,內(nèi)徑1.5mm左右的,長度取18cm,用玻璃刀做,呵呵,很容易的;玻璃管的處理,先用2M 的NaOH 泡 至少 1hr,用自來水沖后;用雙蒸水沖,用雙蒸水泡至少1hr,中間至少換2,3 次水;后用2M的HCL 泡至少1 個小時,用雙蒸水沖,(不能用自來水沖),然后雙蒸水泡至少1 個小時,中間換3,4 次水,可多泡一會。最后泡在無水乙醇里 面1hr,轟干就可以用了.

2.3.1.2 凝膠制備與電聚焦灌IEF的配方為

3.09克尿素

1.125 ml 10%NP-40

1.125ml 水

0.735ml 30%屏息現(xiàn)案 (ACR 28.38 BIS 1.62)

0.15 ml Am 3.5-10

0.375ml Am 5-7

8衛(wèi)生 10%AP

1.8衛(wèi)生 TEMED

用注射器吸好膠液,裝上7號針頭,將7號針頭插入玻管底部,邊推注射器邊提針頭,直到標記處,用微量進樣器小心加入少量水,可見明顯的界面出現(xiàn),讓其聚合1小時以上,適當長一點的時間好一些,我一般是頭天下午灌膠,第2 天下午才開始跑電泳。待膠聚合好后,除去Parafilm并吸去頂部的覆蓋液,加樣80μg,上面再小心加入50m mol/l NaOH至管口,不要破壞樣品與NaOH 的界面。即可進行電泳。電極液為:上槽(負極)為50m mol/l NaOH 液,下槽(正極)為25m mol/l H3PO4。按200V×15min,300V× 30min,400V×18h,1000V×1h的程序進行電聚焦?;蛘咧苯?00V 17hr 1000V 2hr very important thing is跑第一向一定要在保持在37 度左右,特別是冬天,我的方法是 溫控儀控制 暖風機 在37 度 暖風機和電泳槽在一個大的紙箱(密封)里.呵呵,應該可以想象得到吧,第一向溫度特別重要,不然,電聚焦肯定做不好。

2.3.1.3 電泳后的凝條處理

電聚焦完畢后,用注射器吸滿水,套上一個200μl的槍頭,當然槍頭與注射器間用parafilm封住防漏氣。從頂部向下注水使膠條向下滑出。當然,剛開始做的時候肯定不熟,很不爽,有時候你會唱 想哭卻又哭不出來,呵呵,熟悉了就快了,注射器 槍頭 玻璃管必須為一直線,消息不要把注射器的頭搞斷了。取一膠條,用雙蒸水洗凈兩端,按酸端到堿端的順序切成0.5cm 的小段,各自浸入含1.3ml 抽氣后雙蒸水的Eppendorf管中過夜,次日用酸度計分別測定各段的pH值,以凝膠長度為橫坐標,pH值為縱坐標作圖,即為等電點標準曲線。

漫漫擠,管子,200 衛(wèi)生槍頭,注射器,要成一直線,,要用一手扶著管子,一手拿住200 衛(wèi)生槍頭,保證水不從槍頭和管子處流出來, 注射器頂在胸前把膠條擠出后,放在12%TCA里面,在4度可以保存很久,想什么時候跑SDS-PAGE就什么時候跑。絕招哦,不要隨便亂傳,嘿嘿!還可以馬上看一下,膠條上有蛋白質(zhì)沒有,有的話一下就可以看見了。那些說什么放在平衡液里,-20 度的,肯定不行,呵呵!就跟你用考染IEF 膠條一樣的,帶,可能先在12%的TCA 里面看不見,不過你再把它放在水里面,泡一會帶就出來了。不過在平衡之前,要用dd water泡30min,而且要換至少5 次水,每次用不同的小平皿。

注意到下級液磷酸部分的膠條沒,是不是有一節(jié)約2cm左右,比較突出,沒有膨大的部分呀!只是在tca泡的時候磷酸段有一小截變白的速度比較慢,大約3cm左右,呵呵!

對要進行第二向SDS-PAGE 的膠條則必須用平衡液[2.3%SDS,62.5m mol/L Tris-HCL(pH6.8),10%甘油,5%β-巰基乙醇,0.1%溴酚藍]進行二次平衡,第一次20min,第二次25min。第2 次的溶液為新的。一般我是把第2次用過的當成第一次的用 。平衡過程中每隔幾min輕輕的晃一下小平皿。

2.3.2 第二向SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)

選用DYY-Ⅲ型(北京六一儀器廠生產(chǎn))電泳槽(規(guī)格為200×200×1mm),分離膠濃度為12%,無濃縮膠。待膠聚合后,將電聚焦后已經(jīng)平衡的膠條平放于濃縮膠頂端(避免膠條拉直),并用1%瓊脂糖(電極緩沖液配制)封膠,特別應注意避免膠條與分離膠上沿產(chǎn)生氣炮。61廠板子之灌膠:堅決不用凡士林,用透明膠將兩端(板子的2 邊)封住,再用2%瓊脂之SDS-PAGE 電極液封底,待瓊脂凝固后再灌膠,最后用水封膠。over!

做之前,一定要保證,1,灌膠不會有任何問題,不能漏,2,不用濃縮膠,只用分離膠。3,分離膠用水封,要保證凝聚好的PAGE 膠,為一平的線,凹來凸去的就不要用了。玻璃版能用硅化劑最好不過了。防止從邊上漏,我用透明膠(約4cm寬),封住兩邊,下面還是用2%的瓊脂封。灌好電極緩沖液[25m mol/LTris,192m mol/L 甘氨酸及0.1%SDS],按25mA/板膠恒流進行電泳,待溴酚蘭離底部1cm時即可停止電泳,一般電泳耗時約4-5h。銀染:凝膠于40%甲醇,10%醋酸中固定1h以上或者過夜;用水洗1次,5min;30%乙醇洗2×20min;水洗6×5min; 0.02%硫代硫酸鈉1min;水洗3×20s;0.2%硝酸銀,0.02%甲醛快速的潤洗一次,就是過一下的意思,到這個溶液進去,馬上又倒掉;0.2%硝酸銀,0.02%甲醛20min;水洗3×20s;顯色液(3%碳酸鈉,0.05%甲醛,0.0005%硫代硫酸鈉)快速的潤洗一次,就是過一下的意思,到這個溶液進去,馬上又倒掉;顯色液(3%碳酸鈉,0.05%甲醛,0.0005%硫代硫酸鈉)顯色到你所希望的程度,自己看,背景好,點又多的話就可以了;水洗20秒;0.05%甘氨酸停顯。染色理想溫度:我去年4,5月時,通常染色都定在中午,12點多;溫度最好是20 度左右,(這個溫度我也沒控制的)100%TCA領(lǐng)一瓶TCA 500g的那種 按分子克隆上的好象是直接加200多ml 水就成100%TCA了10%TCA, 0.07%2-ME 丙酮 (100ml):

100%TCA 10ml

2-ME 0.07ml

丙酮 90ml

0.07%2-ME 丙酮 (100ml):

2-ME 0.07ml

丙酮 100ml

0 Farrel 液(9.5M Urea,2%NP-40,0.4%Am3.5~10,1.6%5~7,5% 2-ME)

50ml

Urea 28.5g

NP-40 1ml

Ampholine 5~7 2.0ml

3.5~10 0.5ml

2-ME 2.5ml

注意定容!配好后用1.5ml 管分裝!-70度保存

注意 這兩個溶液 配的時候 比如配 50ml 用100ml的燒杯 用量筒量50ml 水 倒如燒杯里面,用記號筆標上刻度,然后把水倒掉,再稱 尿素 小量加水,因為尿素加水后體積會變大,再37 度水域鍋里溶,然后加其它成分,最后再定到50ml

(2002-10-30 18:39:37)

UKS液 (含9.5M Urea, 5mMK2CO3,1.25%SDS,0.5%DTT,2%Ampholine(3.5~10),6%Triton X-100)

25ml 50ml

Urea 14.25g 28.5g

K2CO3 17.25mg 34.5mg

SDS 0.3125g 0.625g

DTT 0.125g 0.25g

2-ME

Ampholine(3.5~10) 1.25ml 2.5ml

Triton X-100 1.5ml 3ml(0.86ml 2 槍,4槍)

2-ME 可適當加一些!注意定容!配好后用1.5ml管分裝!-70度保存!

推薦方法

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